DGI:Opportunistische Infektionen/Pneumocystis Pneumonie/Diagnostik - Revision history

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2024-01-14T18:16:41Z

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imported>Brinkery at 12:21, 10 January 2024

2024-01-10T12:21:57Z

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	Nichtinfektiöse Ursachen:		Nichtinfektiöse Ursachen:

	* Kaposi-Sarkom (KS) der Lunge (bei Patienten mit CD4-Zahl ≤ 100 Zellen/L)		* Kaposi-Sarkom (KS) der Lunge (bei Patienten mit CD4-Zahl ≤ 100 Zellen/µl)
	* ARDS		* ARDS
	* fibrosierende Erkrankungen der Lunge		* fibrosierende Erkrankungen der Lunge

imported>Bestem at 14:49, 1 December 2023

2023-12-01T14:49:10Z

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 '''Mikroskopie von Färbungen und direkten Fluoreszenztests aus BAL und Trachealsekreten'''
 Der mikroskopische Nachweis erlaubt eine Differenzierung zwischen Infektion und Kolonisierung und sollte daher als zusätzliche Methode zur PCR immer mit eingesetzt werden. Allerdings schließt ein negativer mikroskopischer Befund eine PCP nicht aus. Die verschiedenen Färbungen (z.B. Grocott, Giemsa, Fluoreszenztest) haben eine wesentlich geringere Sensitivität und Spezifität (60-80%) als die PCR und qPCR.
-Zur Diagnostik sollten immer mindestens 2 mL BAL oder mehr an die Mikrobiologie versandt werden 35,36.
+Zur Diagnostik sollten immer mindestens 2 mL BAL oder mehr an die Mikrobiologie versandt werden <ref>Morris A, Lundgren JD, Masur H, et al. Current epidemiology of Pneumocystis pneumonia. Emerg Infect Dis 2004; 10(10): 1713-20.</ref><ref>Goto N, Oka S. Pneumocystis jirovecii pneumonia in kidney transplantation. Transpl Infect Dis 2011; 13(6): 551-8.</ref>.
 === Differentialdiagnosen ===

imported>Bestem: quellen

2023-12-01T14:47:43Z

quellen

imported>Brinkery at 05:42, 21 November 2023

2023-11-21T05:42:06Z

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	</div>		</div>

	[[Datei:Diagnostik 1700544809520.png\|mini\|956x956px\|[[Abbildung 1\|Abbildung 1 .]] <span>Untersuchungsmaterialien und -Methoden für die Diagnostik einer PCP.</span> ]]		[[Datei:Diagnostik 1700544809520.png\|mini\|956x956px\|[[Abbildung 1\|Abbildung 1 .]] <span>Untersuchungsmaterialien und -Methoden für die Diagnostik einer PCP.</span> \|alternativtext=\|zentriert]]

imported>Brinkery at 05:41, 21 November 2023

2023-11-21T05:41:20Z

← Older revision		Revision as of 05:41, 21 November 2023
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	[[Datei:Diagnostik 1700544809520.png\|mini\|956x956px\|[[Abbildung 1\|Abbildung 1 .]] <span>Untersuchungsmaterialien und -Methoden für die Diagnostik einer PCP.</span> ]]		[[Datei:Diagnostik 1700544809520.png\|mini\|956x956px\|[[Abbildung 1\|Abbildung 1 .]] <span>Untersuchungsmaterialien und -Methoden für die Diagnostik einer PCP.</span> ]]

imported>Brinkery at 05:40, 21 November 2023

2023-11-21T05:40:43Z

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	[[Datei:Diagnostik 1700544809520.png\|mini\|956x956px\|[[Abbildung 1\|Abbildung 1 .]] <span>Untersuchungsmaterialien und -Methoden für die Diagnostik einer PCP.</span> ]]		[[Datei:Diagnostik 1700544809520.png\|mini\|956x956px\|[[Abbildung 1\|Abbildung 1 .]] <span>Untersuchungsmaterialien und -Methoden für die Diagnostik einer PCP.</span> ]]

























	'''Mikroskopie von Färbungen und direkten Fluoreszenztests aus BAL und Trachealsekreten'''		'''Mikroskopie von Färbungen und direkten Fluoreszenztests aus BAL und Trachealsekreten'''

imported>Brinkery at 05:39, 21 November 2023

2023-11-21T05:39:44Z

← Older revision		Revision as of 05:39, 21 November 2023
Line 1:		Line 1:
	<span> '''Einfaches Thorax-Röntgenbild'''</span><div class="infobox notification-note">		<span> '''Einfaches Thorax-Röntgenbild'''</span><div class="infobox notification-note">
	CAVE:		'''CAVE:'''

	Ein einfaches Röntgenbild ist für die Diagnose oft nicht zielführend, da 10-15 % der Patienten normale Röntgenaufnahmen haben. Ca. 30 % haben unspezifische oder unklare Befunde.		Ein einfaches Röntgenbild ist für die Diagnose oft nicht zielführend, da 10-15 % der Patienten normale Röntgenaufnahmen haben. Ca. 30 % haben unspezifische oder unklare Befunde.
Line 53:		Line 53:

	<span> '''Einfaches Thorax-Röntgenbild'''</span><div class="infobox notification-note">		<span> '''Einfaches Thorax-Röntgenbild'''</span><div class="infobox notification-note">
	CAVE:		'''CAVE:'''

	Es treten auch Besiedelungen mit P. jirovecii auf, die asymptomatisch sind, aber als „Beibefund“ oft bei differentialdiagnostischen Untersuchungen erhoben werden. Aufgrund fehlender Quantifizierung bei PCR-Ergebnissen („ja/nein-Ergebnis“) – werden diese oft labordiagnostisch als PCP gewertet. Eine sichere Unterscheidung PCP/Besiedelung ist durch fehlende Studien zu Erregerlasten/PCP-Cutoffs schwierig. Nur der Nachweis von P. jirovecii mittel PCR ist nicht ausreichend für die Diagnose einer PCP. Klinische Befunde und Laborergebnis sollten immer zusammen betrachtet werden. Ergänzend sollte mit dem Labor Rücksprache zur quantitativen Nachweisgrenze gehalten werden.		Es treten auch Besiedelungen mit P. jirovecii auf, die asymptomatisch sind, aber als „Beibefund“ oft bei differentialdiagnostischen Untersuchungen erhoben werden. Aufgrund fehlender Quantifizierung bei PCR-Ergebnissen („ja/nein-Ergebnis“) – werden diese oft labordiagnostisch als PCP gewertet. Eine sichere Unterscheidung PCP/Besiedelung ist durch fehlende Studien zu Erregerlasten/PCP-Cutoffs schwierig. Nur der Nachweis von P. jirovecii mittel PCR ist nicht ausreichend für die Diagnose einer PCP. Klinische Befunde und Laborergebnis sollten immer zusammen betrachtet werden. Ergänzend sollte mit dem Labor Rücksprache zur quantitativen Nachweisgrenze gehalten werden.

imported>Brinkery at 05:38, 21 November 2023

2023-11-21T05:38:26Z

← Older revision		Revision as of 05:38, 21 November 2023
Line 28:		Line 28:

	Der Nachweis von 1.3 Beta-D-Glukan kann auf eine Pilzinfektion hinweisen, aber nie spezifisch nur auf eine PCP deuten.		Der Nachweis von 1.3 Beta-D-Glukan kann auf eine Pilzinfektion hinweisen, aber nie spezifisch nur auf eine PCP deuten.


			===Diagnostische Schritte===
			'''Initiale (klinische) Diagnostik'''

			Bei passender Symptomatik und typischen Risikofaktoren sollte umgehend ein (low dose) CT der Lunge erfolgen um nach den für die PCP recht typischen milchglasartigen Verschattungen („ground glass opacities“) zu suchen. Außerdem sollte eine kapilläre/arterielle BGA, ein HIV-Test, ein Blutbild und die Bestimmung von CRP und LDH durchgeführt werden.

			Der Erregernachweis sollte im zweiten Schritt mittels broncho-alveoläre Lavage (BAL) erfolgen. Sollte die Durchführung einer BAL nicht möglich sein, kann ein induziertes Sputum oder Trachealsekret verwendet werden, wobei die Diagnose im Sputum nur mittels PCR und nicht per Mikroskopie gelingt!


			'''Labordiagnostik'''

			<u>A. Untersuchungsmaterialien</u>

			Untersuchungsmaterial der Wahl für den Nachweis des Erregers ist BAL, in der ''P. jirovecii'' mit höchster Sensitivität und Spezifität mittels PCR nachgewiesen werden kann.

			<u>B. Labordiagnostische Methoden</u>

			'''Nachweis per PCR und quantitativer PCR aus BAL, Trachealsekret und (mit Einschränkungen) aus induzierten Sputen'''

			Die PCR ist die sensitivste und spezifischste Methode zum Nachweis des Erregers. Idealerweise sollte ein quantitativer Nachweis (qPCR) durchgeführt werden. Bei HIV-negativen Patienten wird häufig eine niedrigere Erregerlast nachgewiesen. Diese Erregerlast ist aber oft mit deutlich schwereren Verläufen assoziiert 20.

			Weiterführende Informationen zur Diagnostik sind in [[Abbildung 1]] zusammengefasst (Leseempfehlungen: 31-34).

			<span> '''Einfaches Thorax-Röntgenbild'''</span><div class="infobox notification-note">
			CAVE:

			Es treten auch Besiedelungen mit P. jirovecii auf, die asymptomatisch sind, aber als „Beibefund“ oft bei differentialdiagnostischen Untersuchungen erhoben werden. Aufgrund fehlender Quantifizierung bei PCR-Ergebnissen („ja/nein-Ergebnis“) – werden diese oft labordiagnostisch als PCP gewertet. Eine sichere Unterscheidung PCP/Besiedelung ist durch fehlende Studien zu Erregerlasten/PCP-Cutoffs schwierig. Nur der Nachweis von P. jirovecii mittel PCR ist nicht ausreichend für die Diagnose einer PCP. Klinische Befunde und Laborergebnis sollten immer zusammen betrachtet werden. Ergänzend sollte mit dem Labor Rücksprache zur quantitativen Nachweisgrenze gehalten werden.
			</div>

			[[Datei:Diagnostik 1700544809520.png\|mini\|956x956px\|[[Abbildung 1\|Abbildung 1 .]] <span>Untersuchungsmaterialien und -Methoden für die Diagnostik einer PCP.</span> ]]

			'''Mikroskopie von Färbungen und direkten Fluoreszenztests aus BAL und Trachealsekreten'''

			Der mikroskopische Nachweis erlaubt eine Differenzierung zwischen Infektion und Kolonisierung und sollte daher als zusätzliche Methode zur PCR immer mit eingesetzt werden. Allerdings schließt ein negativer mikroskopischer Befund eine PCP nicht aus. Die verschiedenen Färbungen (z.B. Grocott, Giemsa, Fluoreszenztest) haben eine wesentlich geringere Sensitivität und Spezifität (60-80%) als die PCR und qPCR.

			Zur Diagnostik sollten immer mindestens 2 mL BAL oder mehr an die Mikrobiologie versandt werden 35,36.

			=== Differentialdiagnosen ===
			Differentialdiagnostisch muss bei Immunsupprimierten an folgende Lungeninfektionen gedacht werden:

			* Tuberkulose
			* Infektionen mit nichttuberkulösen Mykobakterien
			* Aspergillose, Kryptokokkose und weitere Mykosen
			* Cytomegalievirus
			* SARS-CoV-2, Influenza und weitere respiratorische Viren



			Nichtinfektiöse Ursachen:

			* Kaposi-Sarkom (KS) der Lunge (bei Patienten mit CD4-Zahl ≤ 100 Zellen/L)
			* ARDS
			* fibrosierende Erkrankungen der Lunge

imported>Brinkery at 05:30, 21 November 2023

2023-11-21T05:30:52Z

← Older revision		Revision as of 05:30, 21 November 2023
Line 9:		Line 9:
	Bei Verdachtsdiagnose PCP sollte immer ein Thorax-CT erfolgen. Dieses dient auch zum Ausschluss einer PCP.		Bei Verdachtsdiagnose PCP sollte immer ein Thorax-CT erfolgen. Dieses dient auch zum Ausschluss einer PCP.

	Das Thorax-CT kann folgende Charakteristika aufweisen 29:		Das Thorax-CT kann folgende Charakteristika aufweisen 29:

	* Entzündlich verdicktes Interstitium wird als lineare und retikuläre Transparenzminderungen sichtbar.		* Entzündlich verdicktes Interstitium wird als lineare und retikuläre Transparenzminderungen sichtbar.
Line 15:		Line 15:
	* Gleichzeitig auftretende septale Verdickungen bei Vorhandensein von Milchglastrübungen werden als “crazy paving” bezeichnet.		* Gleichzeitig auftretende septale Verdickungen bei Vorhandensein von Milchglastrübungen werden als “crazy paving” bezeichnet.
	* Knötchen können Kavitäten oder “tree-in-bud”-Muster bilden.		* Knötchen können Kavitäten oder “tree-in-bud”-Muster bilden.

← Older revision		Revision as of 14:47, 1 December 2023
Line 9:		Line 9:
	Bei Verdachtsdiagnose PCP sollte immer ein Thorax-CT erfolgen. Dieses dient auch zum Ausschluss einer PCP.		Bei Verdachtsdiagnose PCP sollte immer ein Thorax-CT erfolgen. Dieses dient auch zum Ausschluss einer PCP.

	Das Thorax-CT kann folgende Charakteristika aufweisen 29:		Das Thorax-CT kann folgende Charakteristika aufweisen <ref>Dettmer S, Vogel-Claussen J. Bildgebung bei respiratorischen Infektionen. Pneumologe 2021; 18: 256–67.</ref>:

	* Entzündlich verdicktes Interstitium wird als lineare und retikuläre Transparenzminderungen sichtbar.		* Entzündlich verdicktes Interstitium wird als lineare und retikuläre Transparenzminderungen sichtbar.
Line 15:		Line 15:
	* Gleichzeitig auftretende septale Verdickungen bei Vorhandensein von Milchglastrübungen werden als “crazy paving” bezeichnet.		* Gleichzeitig auftretende septale Verdickungen bei Vorhandensein von Milchglastrübungen werden als “crazy paving” bezeichnet.
	* Knötchen können Kavitäten oder “tree-in-bud”-Muster bilden.		* Knötchen können Kavitäten oder “tree-in-bud”-Muster bilden.



Line 25:		Line 26:
	Laborwertveränderungen sind oft sehr unspezifisch.		Laborwertveränderungen sind oft sehr unspezifisch.

	Eine LDH-Erhöhung kann auf eine PCP hinweisen, ein hoher LDH-Wert ≥ 450 IU kann mit einer negativen Prognose einhergehen 30. Ein normaler LDH-Wert schließt aber eine PCP nicht aus.		Eine LDH-Erhöhung kann auf eine PCP hinweisen, ein hoher LDH-Wert ≥ 450 IU kann mit einer negativen Prognose einhergehen <ref>Zaman MK, White DA. Serum lactate dehydrogenase levels and Pneumocystis carinii pneumonia. Diagnostic and prognostic significance. Am Rev Respir Dis 1988; 137(4): 796-800.</ref>. Ein normaler LDH-Wert schließt aber eine PCP nicht aus.

	Der Nachweis von 1.3 Beta-D-Glukan kann auf eine Pilzinfektion hinweisen, aber nie spezifisch nur auf eine PCP deuten.		Der Nachweis von 1.3 Beta-D-Glukan kann auf eine Pilzinfektion hinweisen, aber nie spezifisch nur auf eine PCP deuten.
Line 36:		Line 37:

	Der Erregernachweis sollte im zweiten Schritt mittels broncho-alveoläre Lavage (BAL) erfolgen. Sollte die Durchführung einer BAL nicht möglich sein, kann ein induziertes Sputum oder Trachealsekret verwendet werden, wobei die Diagnose im Sputum nur mittels PCR und nicht per Mikroskopie gelingt!		Der Erregernachweis sollte im zweiten Schritt mittels broncho-alveoläre Lavage (BAL) erfolgen. Sollte die Durchführung einer BAL nicht möglich sein, kann ein induziertes Sputum oder Trachealsekret verwendet werden, wobei die Diagnose im Sputum nur mittels PCR und nicht per Mikroskopie gelingt!



Line 48:		Line 50:
	'''Nachweis per PCR und quantitativer PCR aus BAL, Trachealsekret und (mit Einschränkungen) aus induzierten Sputen'''		'''Nachweis per PCR und quantitativer PCR aus BAL, Trachealsekret und (mit Einschränkungen) aus induzierten Sputen'''

	Die PCR ist die sensitivste und spezifischste Methode zum Nachweis des Erregers. Idealerweise sollte ein quantitativer Nachweis (qPCR) durchgeführt werden. Bei HIV-negativen Patienten wird häufig eine niedrigere Erregerlast nachgewiesen. Diese Erregerlast ist aber oft mit deutlich schwereren Verläufen assoziiert 20.		Die PCR ist die sensitivste und spezifischste Methode zum Nachweis des Erregers. Idealerweise sollte ein quantitativer Nachweis (qPCR) durchgeführt werden. Bei HIV-negativen Patienten wird häufig eine niedrigere Erregerlast nachgewiesen. Diese Erregerlast ist aber oft mit deutlich schwereren Verläufen assoziiert <ref>Thomas CF, Jr., Limper AH. Pneumocystis pneumonia. N Engl J Med 2004; 350(24): 2487-98.</ref>.

	Weiterführende Informationen zur Diagnostik sind in [[Abbildung 1]] zusammengefasst (Leseempfehlungen: 31-34).		Weiterführende Informationen zur Diagnostik sind in [[Abbildung 1]] zusammengefasst (Leseempfehlungen: <ref>Muhlethaler K, Bogli-Stuber K, Wasmer S, et al. Quantitative PCR to diagnose Pneumocystis pneumonia in immunocompromised non-HIV patients. Eur Respir J 2012; 39(4): 971-8.</ref><ref>Sokulska M, Kicia M, Wesolowska M, Hendrich AB. Pneumocystis jirovecii-from a commensal to pathogen: clinical and diagnostic review. Parasitol Res 2015; 114(10): 3577-85.</ref><ref>Gits-Muselli M, White PL, Mengoli C, et al. The Fungal PCR Initiative's evaluation of in-house and commercial Pneumocystis jirovecii qPCR assays: Toward a standard for a diagnostics assay. Med Mycol 2020; 58(6): 779-88.</ref><ref>Alanio A, Desoubeaux G, Sarfati C, et al. Real-time PCR assay-based strategy for differentiation between active Pneumocystis jirovecii pneumonia and colonization in immunocompromised patients. Clin Microbiol Infect 2011; 17(10): 1531-7.</ref>).

	<span> '''Einfaches Thorax-Röntgenbild'''</span><div class="infobox notification-note">		<span> '''Einfaches Thorax-Röntgenbild'''</span><div class="infobox notification-note">