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| =Erreger=
| | Das Erregerspektrum nosokomialer Pneumonien umfaßt Bakterien, Pilze und Viren. bei immunkompetenten Patient:in:innen eine untergeordnete Rolle spielen. In der folgenden Tabelle sind die relevanten bakteriellen Infektionserreger entsprechend ihrer Risikofaktoren aufgeführt. Multiresistente Erreger (MRE) sind insgesamt selten, erfordern jedoch eine gezielte Berücksichtigung bei Patient:in:innen mit spezifischen Risikokonstellationen. |
| <span style="font-size:12.0pt;mso-bidi-font-size:11.0pt">Nachfolgend werden die wichtigsten Erreger nosokomialer Pneumonien und ihre wichtigsten Resistenzmechanismen tabellarisch dargestellt:</span>
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| {| class="wikitable sortable bs-exportable MsoTableGrid" style="width:100%;" border="1" cellspacing="0" cellpadding="0" | | {| class="wikitable" style="" |
| |+ | | |+ |
| ! colspan="4" style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:453.1pt;" class="col-grey-light-bg" width="604" valign="top" |Keimspektrum der HAP/VAP*)[A1] | | !Erregerspektrum bei Atemwegsinfektionen nicht invasiv beatmeter (NIV) Patienten |
| |- style="mso-yfti-irow:1"
| | !Erregerspektrum bei Atemwegsinfektionen invasiv beatmeter (NIV) Patienten |
| ! style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:3.0cm;" class="col-grey-light-bg" width="113" valign="top" |Keim | | |- |
| ! style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:77.95pt;" class="col-grey-light-bg" width="104" valign="top" |Art der Pneumonie
| | |Bakterien 55,7 % |
| ! style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:99.0pt;" class="col-grey-light-bg" width="132" valign="top" |Besonderheiten
| | 45,2 % gramnegativ, 15,8 % grampositiv |
| ! style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:191.1pt;" class="col-grey-light-bg" width="255" valign="top" |Resistenzsituation in Deutschland
| |
| |- style="mso-yfti-irow:2"
| |
| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:3.0cm;" width="113" valign="top" |Streptococcus pneumoniae
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:77.95pt;" class="col-white-bg" width="104" valign="top" |Early-onset Pneumonie
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:99.0pt;" width="132" valign="top" |Keine antibiotsche Vorbehandlung
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:191.1pt;" width="255" valign="top" |· < 1% der Stämme resistent gegenüber Penicillinen
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| · < 1% gegenüber Drittgenerations-Cephalosporinen
| | 3MRGN 3 %, 4MRGN 0,8 % |
| | |Bakterien 79,2 % |
| | 65,5 % gramnegativ, 22 % grampositiv |
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| · 8-10% Resistenzraten gegenüber Erythromycin und anderen Makrolidantibiotika
| | 3MRGN 5,1 %, 4MRGN 1,6 % |
| |- style="mso-yfti-irow:3" | | |- |
| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:3.0cm;" width="113" valign="top" |Haemophilus influenzae | | |Bakterien 55,7 % |
| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:77.95pt;" width="104" valign="top" |Early-onset Pneumonie, VAP
| | - S. aureus 11,4 % (davon 2,5 % MRSA) |
| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:99.0pt;" width="132" valign="top" |Keine antibiotische Vorbehandlung
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:191.1pt;" width="255" valign="top" |10-15% resistent gegenüber Amino- und Ureidopenicillinen
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| |- style="mso-yfti-irow:4"
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:3.0cm;" width="113" valign="top" |Methicillin-empfindlicher Staphylococcus aureus (MSSA)
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:77.95pt;" width="104" valign="top" |Early-onset Pneumonie
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| Late-onset Pneumonie
| | - K. pneumoniae 8,5 % |
| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:99.0pt;" width="132" valign="top" |Häufigster oder zweithäufigster Erreger der HAP
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:191.1pt;" width="255" valign="top" |Resistenzraten gegenüber Penicillinase-festen Betalaktamantibiotika, Makrolide, Clindamycin und Fluorchinolone unter 10%
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| |- style="mso-yfti-irow:5"
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:3.0cm;" width="113" valign="top" |Methicillin-resistenter
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| Staphylococcus aureus (MRSA)
| | (davon 0,6 % 3MRGN) |
| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:77.95pt;" width="104" valign="top" |Early-onset Pneumonie
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| Late-onset
| | - E. coli 10,5 % (davon 0,8 % 3MRGN) |
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| Pneumonie
| | - P. aeruginosa 7,8 % (davon 0,8 % 4MRGN) |
| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:99.0pt;" width="132" valign="top" |Zunehmende Häufigkeit mit Krankenhaus-verweildauer
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:191.1pt;" width="255" valign="top" |· 100% empfindlich für Vancomycin, Teicoplanin und Linezolid
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| · Daptomycin, Tigecyclin nicht zugelassen
| | - E. cloacae 3,6 % (davon 0,5 % 3MRGN) |
| | |Bakterien 79,2 % |
| | - S. aureus 17,1 % (davon 2,4 % MRSA) |
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| · Resistenzraten gegenüber Fosfomycin, Fusidinsäure, Co-Trimoxazol, Rifampicin unter 5%
| | - K. pneumoniae 11,7 % (davon 1,1 % 3MRGN) |
| |- style="mso-yfti-irow:6"
| |
| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:3.0cm;" width="113" valign="top" |Pseudomonas aeruginosa
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:77.95pt;" width="104" valign="top" |Early-onset Pneumonie
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| Late-onset
| | - E. coli 13,6 % (davon 1,5 % 3MRGN) |
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| Pneumonie
| | - P. aeruginosa 13,3 % (davon 1 % 4MRGN) |
| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:99.0pt;" width="132" valign="top" |Häufigster oder zweithäufigster Erreger der HAP
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| Patienten mit strukturellen Lungenerkrankungen und chronischer Besiedlung
| | - E. cloacae 4,9 % (davon 0,2 % 3MRGN) |
| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:191.1pt;" width="255" valign="top" |Intrinsische Resistenz gegenüber Ampicillin, Co-Trimoxazol Drittgenerations-Cephalosporinen der Cefotaximgruppe. | | |- |
| | | |Pilze 5,6 % |
| Zunehmende erworbene Resistenz gegenüber Pseudomonas-wirksamen Antibiotika (Piperacillin, Ceftazidim, Cefepim, Fluorchinolonen, Aminoglykosiden, Carbapenemen)
| | |Pilze 5,3 % |
| |- style="mso-yfti-irow:7" | | |- |
| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:3.0cm;" width="113" valign="top" |Enterobacteriaceae | | |Viren 1,2 % |
| | |Viren 0,3 % |
| | |} |
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| (E. coli, K. oxytoca, K. pneumoniae, Enterobacter spp., S. marcescens, Proteus spp., Citrobacter spp.)
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:77.95pt;" width="104" valign="top" |Early-onset Pneumonie
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| Late-onset
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| Pneumonie | | Aktuelle Daten zur nosokomialen Pneumonie (HAP) in Europa zeigen, dass Serratia marcescens (2,3–4,3 %), Stenotrophomonas maltophilia (2,9–3,2 %), Haemophilus influenzae (2,4–3 %) und Streptococcus pneumoniae (ca. 1 %) seltene Erreger darstellen. Acinetobacter-Spezies weisen eine regionale Variabilität auf: In Westeuropa sind sie mit 1,9 % selten, während sie in Osteuropa mit bis zu 19 % häufiger vorkommen. |
| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:99.0pt;" width="132" valign="top" |Unter den zehn häufigsten Erregern der HAP
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| Lokale Ausbruch-situationen
| | Der Stellenwert virale Erreger wird durch Zunahme entsprechender Diagnostik deutlicher, Viren können auch bei immunkompetenten Patient:in:innen Pneumonien auslösen. Wichtige Viren sind Influenza, Respiratorisches Synzytial-Virus (RSV) und SARS-CoV-2. Eine bakterielle Ko-Infektion verschlechtert das Outcome signifikant. Faktoren wie Alter, Saisonalität, geografisches Umfeld und Immunstatus beeinflussen die virale Ätiologie. |
| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:191.1pt;" width="255" valign="top" |· Resistenzzunahme insb. gegenüber Fluorchinolonen (überwiegend bei E. coli, vermehrt auch bei Klebsiella spp.)
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| · Resistenzen gegenüber Cephalosporinen der Cefotaximgruppe und Betalaktam-Betalaktamase-Inhibitorkombinationen
| | Auch wenn Aspergillus fumigatus bei immunkompetenten Patient:in:innen ein seltener Erreger nosokomialer Pneumonien ist, sollte insbesondere bei kritisch kranken Patient:in:innen an die Möglichkeit einer invasiven pulmonalen Aspergillose (IPA) gedacht werden. Die aktuelle Leitlinie betont die Bedeutung einer frühzeitigen Erkennung, da Risikofaktoren wie Leberzirrhose, Neutropenie, eine langfristige Steroidtherapie (>4 Wochen, >20 mg Prednisolon oder Äquivalent), COPD und rheumatologische Grunderkrankungen das Risiko deutlich erhöhen. Zudem haben schwere Influenza- und SARS-CoV-2-Verläufe insbesondere bei intensivpflichtigen Patient:in:innen das Potenzial, eine IPA zu begünstigen, weshalb dieser Aspekt in der Diagnostik und Therapieentscheidung berücksichtigt werden sollte. |
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| · In Deutschland ca. 10-15% ESBL-bildendende E. coli und K. pneumoniae Stämme, oft mit gleichzeitiger Resistenz gegenüber Fluorchinolonen und Aminoglykosiden
| | Multiresistente Erreger (MRE) sind insgesamt selten, erfordern jedoch besondere Aufmerksamkeit bei der Therapieplanung. |
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| · In der Enterobacter-Serratia-Citrobacter Gruppe häufig Resistenz gegenüber Penicillinen und Cephalosporinen
| | Gemäß der aktualisierten S3-Leitlinie zur nosokomialen Pneumonie (Rademacher et al., 2024) gibt es bestimmte Mikroorganismen, die trotz ihres Nachweises in Atemwegsproben nicht als Erreger einer nosokomialen Pneumonie gelten. Dazu zählen: |
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| · Häufigkeit Carbapenem-resistenter Enterobakterien in Deutschland gering (<1%)
| | Bakterien der oropharyngealen Standortflora: |
| |- style="mso-yfti-irow:8"
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:3.0cm;" width="113" valign="top" |Acinetobacter spp. (A. baumannii, A. nosocomialis, A. pittii)
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:77.95pt;" width="104" valign="top" |Late-onset VAP
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:99.0pt;" width="132" valign="top" |
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:191.1pt;" width="255" valign="top" |· Intrinsische Resistenz gegenüber Penicilline und Cephalosporine
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| · Erworbene Resistenzen gegenüber Fluorchinolone, Aminoglykoside, Carbapeneme
| | ○ Corynebacterium spp. |
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| · Zunehmend panresistente Stämme mit Colistin Empfindlichkeit allerdings kommen inzwischen auch Colistin-resistente Stämme vor
| | ○ Apathogene Neisseria spp. |
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| · Therapie mit Imipenem oder Meropenem. Bei Carbapenem-Resistenz ist Colistin indiziert, möglichst in Kombination mit einer weiteren in vitro wirksamen Substanz. Tigecyclin ist eine zusätzliche Option für die Salva-ge-Therapie dar, ist aber für die Behandlung der Pneumonie nicht zugelassen
| | ○ Alpha-hämolysierende (vergrünende) Streptokokken |
| |- style="mso-yfti-irow:9"
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:3.0cm;" width="113" valign="top" |Steno-trophomonas maltophilia
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:77.95pt;" width="104" valign="top" |Late-onset VAP
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:99.0pt;" width="132" valign="top" |Entscheidender Risikofaktor: Vorausgehende Therapie mit einem Breitspektrum-Antibiotikum
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:191.1pt;" width="255" valign="top" |· Umfangreiche intrinsische Resistenz gegenüber einer Vielzahl von Antibiotikaklassen
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| · Zuverlässig wirksam nur Co-Trimoxazol sowie Fluorchinolone, Resistenzen gegenüber diesen Substanzen kommen jedoch vor
| | ○ Koagulase-negative Staphylokokken |
| |- style="mso-yfti-irow:10"
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:3.0cm;" width="113" valign="top" |Legionella pneumophila
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:77.95pt;" width="104" valign="top" |Insbesondere bei immun-kompromittierten Patienten
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:99.0pt;" width="132" valign="top" |Belastung in der Wasserversorgung
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:191.1pt;" width="255" valign="top" |
| |
| |- style="mso-yfti-irow:11;mso-yfti-lastrow:yes"
| |
| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:3.0cm;" width="113" valign="top" |Aspergillus spp.
| |
| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:77.95pt;" width="104" valign="top" |Patienten mit definierter Immunsuppression
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:99.0pt;" width="132" valign="top" |Risikofaktoren: Intensiv-Patienten, COPD, Glucocorticoid-medikation, Influenza-Pneumonie
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:191.1pt;" width="255" valign="top" |Für A. fumigatus empfiehlt die ESCMID eine Testung auf Resistenz gegenüber Azolantimykotika. Insgesamt ist die Resistenzlage in Deutschland noch unproblematisch. Nur bei lokal erhöhten Raten Azol-resistenter A. fumigatus ist zu überlegen, ob bis zum Nachweis eines sensiblen Erregers eine Therapie gewählt wird, die auch Azol-resistente Stämme erfasst, z.B. eine Kombination aus Voriconazol und entweder Echinocandin oder L-AmB.**)
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| | Enterokokken: |
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| | ○ Enterococcus faecalis |
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| '''Häufige Erreger der Aspirationspneumonie'''
| | ○ Enterococcus faecium |
| {| class="wikitable sortable bs-exportable MsoTableGrid" style="width:100%;" border="1" cellspacing="0" cellpadding="0"
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:453.55pt;" width="605" valign="top" |Bacteriodes spp.
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| |- style="mso-yfti-irow:1"
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:453.55pt;" width="605" valign="top" |Peptostreptokokken (Anaerobier)
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| |- style="mso-yfti-irow:2"
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:453.55pt;" width="605" valign="top" |S. aureus, S. pneumoniae und andere Grampositive Kokken
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| |- style="mso-yfti-irow:3"
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:453.55pt;" width="605" valign="top" |Strepococcus milleri
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| |- style="height:12.95ptpx;"
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:453.55pt;" width="605" valign="top" |<span style="color: black">Escherichia coli</span><span style="color: black">, Klebsiella pneumoniae und P. aeruginosa</span>
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| |- style="mso-yfti-irow:5;mso-yfti-lastrow:yes"
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| | style="border-left-width:1px;border-right-width:1px;border-top-width:1px;border-bottom-width:1px;border-left-color:#000000;border-right-color:#000000;border-top-color:#000000;border-bottom-color:#000000;width:453.55pt;" width="605" valign="top" |Nocardia spp.
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| | Pilze: |
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| | ○ Candida spp. |
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| | Der Nachweis dieser Mikroorganismen, selbst in größerer Menge in invasiv gewonnenem Atemwegsmaterial, rechtfertigt in der Regel keine antimikrobielle Therapie. Die aktualisierte HAP- Leitlinie empfiehlt daher, die Diagnostik dieser Mikroorganismen auf Genus- bzw. Speziesebene zu beschränken und auf Resistenzbestimmungen zu verzichten, um Fehltherapien zu vermeiden. |
Das Erregerspektrum nosokomialer Pneumonien umfaßt Bakterien, Pilze und Viren. bei immunkompetenten Patient:in:innen eine untergeordnete Rolle spielen. In der folgenden Tabelle sind die relevanten bakteriellen Infektionserreger entsprechend ihrer Risikofaktoren aufgeführt. Multiresistente Erreger (MRE) sind insgesamt selten, erfordern jedoch eine gezielte Berücksichtigung bei Patient:in:innen mit spezifischen Risikokonstellationen.
| Erregerspektrum bei Atemwegsinfektionen nicht invasiv beatmeter (NIV) Patienten
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Erregerspektrum bei Atemwegsinfektionen invasiv beatmeter (NIV) Patienten
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| Bakterien 55,7 %
45,2 % gramnegativ, 15,8 % grampositiv
3MRGN 3 %, 4MRGN 0,8 %
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Bakterien 79,2 %
65,5 % gramnegativ, 22 % grampositiv
3MRGN 5,1 %, 4MRGN 1,6 %
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| Bakterien 55,7 %
- S. aureus 11,4 % (davon 2,5 % MRSA)
- K. pneumoniae 8,5 %
(davon 0,6 % 3MRGN)
- E. coli 10,5 % (davon 0,8 % 3MRGN)
- P. aeruginosa 7,8 % (davon 0,8 % 4MRGN)
- E. cloacae 3,6 % (davon 0,5 % 3MRGN)
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Bakterien 79,2 %
- S. aureus 17,1 % (davon 2,4 % MRSA)
- K. pneumoniae 11,7 % (davon 1,1 % 3MRGN)
- E. coli 13,6 % (davon 1,5 % 3MRGN)
- P. aeruginosa 13,3 % (davon 1 % 4MRGN)
- E. cloacae 4,9 % (davon 0,2 % 3MRGN)
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| Pilze 5,6 %
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Pilze 5,3 %
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| Viren 1,2 %
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Viren 0,3 %
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Aktuelle Daten zur nosokomialen Pneumonie (HAP) in Europa zeigen, dass Serratia marcescens (2,3–4,3 %), Stenotrophomonas maltophilia (2,9–3,2 %), Haemophilus influenzae (2,4–3 %) und Streptococcus pneumoniae (ca. 1 %) seltene Erreger darstellen. Acinetobacter-Spezies weisen eine regionale Variabilität auf: In Westeuropa sind sie mit 1,9 % selten, während sie in Osteuropa mit bis zu 19 % häufiger vorkommen.
Der Stellenwert virale Erreger wird durch Zunahme entsprechender Diagnostik deutlicher, Viren können auch bei immunkompetenten Patient:in:innen Pneumonien auslösen. Wichtige Viren sind Influenza, Respiratorisches Synzytial-Virus (RSV) und SARS-CoV-2. Eine bakterielle Ko-Infektion verschlechtert das Outcome signifikant. Faktoren wie Alter, Saisonalität, geografisches Umfeld und Immunstatus beeinflussen die virale Ätiologie.
Auch wenn Aspergillus fumigatus bei immunkompetenten Patient:in:innen ein seltener Erreger nosokomialer Pneumonien ist, sollte insbesondere bei kritisch kranken Patient:in:innen an die Möglichkeit einer invasiven pulmonalen Aspergillose (IPA) gedacht werden. Die aktuelle Leitlinie betont die Bedeutung einer frühzeitigen Erkennung, da Risikofaktoren wie Leberzirrhose, Neutropenie, eine langfristige Steroidtherapie (>4 Wochen, >20 mg Prednisolon oder Äquivalent), COPD und rheumatologische Grunderkrankungen das Risiko deutlich erhöhen. Zudem haben schwere Influenza- und SARS-CoV-2-Verläufe insbesondere bei intensivpflichtigen Patient:in:innen das Potenzial, eine IPA zu begünstigen, weshalb dieser Aspekt in der Diagnostik und Therapieentscheidung berücksichtigt werden sollte.
Multiresistente Erreger (MRE) sind insgesamt selten, erfordern jedoch besondere Aufmerksamkeit bei der Therapieplanung.
Gemäß der aktualisierten S3-Leitlinie zur nosokomialen Pneumonie (Rademacher et al., 2024) gibt es bestimmte Mikroorganismen, die trotz ihres Nachweises in Atemwegsproben nicht als Erreger einer nosokomialen Pneumonie gelten. Dazu zählen:
Bakterien der oropharyngealen Standortflora:
○ Corynebacterium spp.
○ Apathogene Neisseria spp.
○ Alpha-hämolysierende (vergrünende) Streptokokken
○ Koagulase-negative Staphylokokken
Enterokokken:
○ Enterococcus faecalis
○ Enterococcus faecium
Pilze:
○ Candida spp.
Der Nachweis dieser Mikroorganismen, selbst in größerer Menge in invasiv gewonnenem Atemwegsmaterial, rechtfertigt in der Regel keine antimikrobielle Therapie. Die aktualisierte HAP- Leitlinie empfiehlt daher, die Diagnostik dieser Mikroorganismen auf Genus- bzw. Speziesebene zu beschränken und auf Resistenzbestimmungen zu verzichten, um Fehltherapien zu vermeiden.